교신저자:김용대, 705-717 대구광역시 남구 대명5동 317-1
영남대학교 의과대학 이비인후과학교실
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서
론
염증반응에 관여하는 prostaglandin의 생합성과정은 여러 가지 사이토카인이나 염증성 매개 물질이 관여하는 아주 복잡한 과정으로 이 중 cyclooxygenase(COX)가 중요한 역할을 담당한다.1) COX는 두 가지 형태가 존재하며 COX-1은 대부분의 세포에서 발현되어 세포의 항상성 유지에 관여하고,2) COX-2는 특정세포에서 염증성 전구사이토카인3)이나 lipopolysaccharide,2)4) 성장인자5)등에 의해서 발현이 증가되어 염증반응을 진행시키는데 중요한 역할을 하는 효소이다.
사람의 호흡기 상피세포에서 COX-2의 발현은 염증성 전구사이토카인에 의해서 이루어지며1) 이러한 COX-2의 발현과정에는 여러 단계의 신호전달(signal transduction) 물질이 관여할 것으로 생각된다. 한편, 염증반응에서 COX-2발현에 관여하는 신호전달체계를 이해하는 것은 사람의 호흡기 염증반응을 조절하는데 필수적이라고 생각된다.
최근 연구에 의하면 Kim 등6)은 NCI-H292 호흡기 상피세포에서 IL-1β에 의해 COX-2 유전자 및 단백이 발현되며 이는 전사단계에서 조절된다고 보고하였다. 한편 Lin 등7)은 인체 호흡기 상피세포에서
IL-1β가 COX-2의 발현을 자극하는 과정에서 protein kinase C-γ(PKC-γ)의 관련여부를 연구하였고, Chen 등1)은 인체 폐상피세포에서
TNF-α에 의한 COX-2의 발현에서 phospholipase
C-γ2, protein kinase
C-α, tyrosine kinase 등의 관련여부를 연구하였다. 하지만 인체 기도 상피세포에서
IL-1β가 COX-2 유전자의 발현과 단백생성을 촉진하는 과정에 있어서 mitogen-activated protein kinase(MAPK)와 PKC가 관여하는지 여부와 두 신호전달물질간의 상호관계는 명확하지 않다.
이에 저자들은 사람의 호흡기 상피세포에서 IL-1β에 의한 COX-2 발현 과정에 PKC, MAPKs, tyrosine kinase, phosphatidylinositol 3-kinase(PI3K) 등과 같은 신호전달물질이 관여하는지 여부와 각 물질간의 상호작용에 대하여 알아보고자 하였다.
대상 및 방법
세포배양 및 처치
사람의 호흡기 상피세포인 NCI-H292 세포(human pulmonary mucoepidermoid carcinoma cell line, American Type Culture Collection, Rockville, MD)를 6개의 실험판에 1×106 /ml의 세포 수로 RPMI 1640 배양액(10% fetal calf serum, penicillin 100 U/ml, streptomycin 100 μg/ml를 추가)이 들어있는 배지에 분주하여
37°C, 5% CO2에서 배양하였다. 배양이 어느 정도 이루어지면, 세포를 24시간 동안 0.5% fetal calf serum을 포함하는 RPMI 1640 배지에서 배양하고 phosphate buffered saline(PBS)으로 세척한 후 human recombinant
IL-1β(R & D Systems, Minneapolis, MN)를 20 ng/ml의 농도로 투여하고
37°C에서 8시간 동안 배양하여 COX-2 유전자와 단백의 발현정도를 분석하였다.
IL-1β에 의한 COX-2의 발현에 어떠한 신호전달체계가 관여하는지를 알아보기 위하여 mitogen-activated protein kinase kinase(MEK)/extracellular regulated kinase(ERK) 억제제인 PD98095(Biomol Research Labora-tories, Inc., Plymouth Meeting, PA), p38 억제제인 SB203580(Biomol Research Laboratories), protein kinase C(PKC) 억제제인 Ro31-8220(Biomol Research Laboratories), tyrosine kinase 억제제인 genistein(Bio-mol Research Laboratories), PI3K 억제제인 LY294002 (Biomol Research Laboratories) 등을
IL-1β를 투여하기 1시간 전에 각각 전처치하고, 8시간 동안 IL-1β를 처리한 세포와 처리하지 않은 세포에서 COX-2 유전자와 단백의 발현여부를 검토하였다.
모든 실험과정은 같은 결과가 5회 이상 나오도록 반복하였다.
RT-PCR에 의한 COX-2 유전자의 분석
총 mRNA의 추출은 배양한 NCI-H292 세포에서 Tri-Reagent(Molecular Research Center, Cincinnati, OH)를 이용하였다. COX-2 유전자의 측정은 변형된 reverse transcriptase-polymerase chain reaction(RT-PCR) 방법을 이용하였다.8) 총 mRNA는 무작위 hexanucleotide primer와 Moloney murine leukemia virus(MMLV) 역전사효소(Perkin Elmer, Morrisville, NC)를 이용하여 cDNA로 합성하였다. PCR과정은
94°C에서 12분간 전 처리하고 denaturation은 95°C에서 1분, annealing은
54°C에서 1분, extension은 72°C에서 1분간 22번을 반복 실시하였으며 마지막으로
72°C에서 20분간 반응하였다. PCR의 산물은 1% Tris-boric acid-EDTA(TBE) 완충용매와 2% agarose gel에서 전기영동을 이용하였다.
COX-2 유전자의 primer의 염기서열은
5':TTC AAA TGA GAT TGT GGG AAA AT,
3':AGA TCA TCT CTG CCT GAG TAT CTT이다.
Western blot에 의한 단백 측정
COX-2 단백과 MAPKs 및 인산화되어 활성화된 MAPK의 측정에 Western blot 방법을 사용하였다.
NCI-H292 세포에서 lysis buffer(50 mM Tris·Cl , 1 mM EGTA, 1% Triton X-100, 1 mM phenylmethylsulfonyl fluoride)로 단백질을 추출하여 정량을 하였다. 정량한 단백을 10% SDS-polyacrylam-ide gel에 80 μg을 주입하여 2시간 동안 20 mA에서 전기영동을 하였다. 분리된 단백을 300 mA로 3시간 동안 방치하여 니트로셀룰로오스막에 이동시킨 후, 5% non-fat milk로 비특이적 단백 결합을 방지하였다. 일차항체인 COX-2 polyclonal antibody(Cayman Chemical Company, Ann Arbor, MI) 및 ERK, p38, c-Jun NH2 terminal kinase(JNK), phospho-ERK(New England BioLabs, Beverly, MA), phospho-p38(New England BioLabs), phospho-JNK(New England BioLabs) 항체를 각각 1:2,000으로 희석하여 4시간 동안 반응시킨 후, 이차항체인 goat anti-rabbit IgG-horseradish peroxidase conjugate(Bio-rad Laboratories, Hercules, CA)를 1:2,000으로 희석하여 2시간 동안 반응시켰다. 세 번 세척 후 enhanced chemiluminescence(Amersham Pharmacia Biotech, Inc., Burkingham Shire, England) 시약으로 X-ray 필름에 감광시켜 COX-2 단백을 확인하였다.
결 과
IL-1β에 의한 COX-2 단백의 발현
NCI-H292 세포를 IL-1β가 0.02, 0.2, 2, 20 ng/ml의 농도로 포함된 배지에서
37°C로 8시간 동안 배양하였다. IL-1β의 처리농도가 증가함에 따라 COX-2 단백질의 발현양이 증가하였다. COX-2 단백은
IL-1β의 농도가 0.02 ng/ml부터 증가하기 시작하여 20 ng/ml일 때 최고치에 도달하였다(Fig. 1). 양성 대조군으로 heat shock protein(HSP) 70을 사용하였으며
IL-1β의 농도에 관계없이 일정하였다. 이상의 결과는 저자들의 이전 연구와 일치하였다.6)
IL-1β에 의한 MAPK의 활성화
IL-1β가 MAPK를 활성화시키는지의 여부를 알기 위해 IL-1β(20 ng/ml)를 투여한 후 MAPK인 ERK, p38, JNK의 인산화 정도를 시간경과에 따라 측정하였다. ERK, p38, JNK 모두
IL-1β 투여 후 인산화된 형태의 양이 증가하였고 20분에서 30분 사이에서 최대치를 나타내었다. 따라서 NCI-H292 세포에서
IL-1β는 ERK, p38, JNK를 활성화시킨다는 사실을 알 수 있었다. 양성 대조군으로 ERK2를 이용하였다(Fig. 2).
MAPK인 ERK, p38에 의한 COX-2 유전자 및 단백 조절
IL-1β가 COX-2의 발현을 촉진하는 과정에 ERK가 관련되어 있는지의 여부를 알기 위해서 MEK/ERK 억제제인 PD98059(50 μM)를 전처치하고
IL-1β(20 ng/ml)를 처리한 후 ERK의 인산화 정도와 COX-2 유전자 및 단백을 관찰하였다. PD98059를 전처치한 세포에서는 ERK의 인산화가 억제되었고(Fig. 3A), COX-2 유전자와 단백의 발현도 감소하였다(Fig. 3B).
IL-1β에 의한 COX-2 발현에 p38이 관계하고 있는지를 알기 위하여 p38 억제제인 SB203580(10 μM)를 전처치하고
IL-1β(20 ng/ml)를 처리한 후 p38의 인산화 정도와 COX-2 유전자와 단백의 발현여부를 관찰하였다. SB203580 을 전처치한 경우 p38의 인산화는 억제되었으나(Fig. 4A) COX-2 유전자와 단백의 발현은 억제하지 못하였다(Fig. 4B).
PKC에 의한 COX-2 유전자 및 단백 조절
IL-1β에 의한 COX-2 발현과정에 PKC가 관련되어있는지를 검토하기 위해서 PKC 억제제인 Ro31-8220(20 μM)을 전처치하고
IL-1β를 처리한 후 MAPK들의 인산화 정도와 COX-2 유전자 및 단백의 정도를 알아보았다. Ro31-8220을 전처치한 세포에서는 COX-2 유전자와 단백의 발현이 억제되었다(Fig. 5B). 또한 Ro31-8220은 MAPK 중 ERK의 인산화만을 억제하였고, p38과 JNK의 인산화는 억제하지 못하였다(Fig. 5A).
Tyrosine kinase와 PI3K에 의한 COX-2 유전자 및 단백 조절
IL-1β가 COX-2 발현을 자극하는 과정에 tyrosine kinase가 관계하고 있는지를 알아보기 위해서 tyrosine kinase 억제제인 genistein(100 μg/ml)을 전처치하고
IL-1β를 처리한 후 COX-2 유전자와 단백의 발현여부를 관찰하였다. Genistein을 전처치한 세포와 전처치하지 않은 세포사이에 COX-2 유전자와 단백의 발현정도의 차이는 없었다(Fig. 6).
또한 IL-1β에 의한 COX-2 발현에 PI3K의 관련여부를 검토하기 위해서 PI3K 억제제인 LY294002(25 μM)를 전처치하고
IL-1β를 처리한 후에 COX-2 유전자와 단백이 발현되는 양상을 관찰하였다. LY294002는 COX-2 유전자와 단백의 발현을 억제하지 못하였다(Fig. 7).
고 찰
사람의 호흡기 염증반응에서 중요한 prostaglandin의 생합성에서는 COX-2의 발현이 중요한 역할을 한다.9)10) 그러므로 COX-2의 발현에 이르는 신호전달체계에 관여하는 단백을 규명하는 것은 사람의 호흡기 염증반응의 발생을 억제하고 진행을 조절하는데 중요하다. 그래서 많은 연구자들이 사람의 호흡기 상피세포에서 COX-2의 발현과 prostaglandin 생성 조절에 연구초점을 맞추고 있다.
저자들은 이미 이전의 실험에서 IL-1β가 전사단계를 조절하여 COX-2 유전자와 단백을 조절한다고 보고하였다.6) 따라서, 본 연구는
IL-1β에 의한 COX-2의 발현에 관계하는 신호전달체계를 규명하고자 일반적인 신호전달체계에 관여하는 것으로 알려진 대표적인 몇 가지 조절인자의 억제제를 사용하여 COX-2 유전자 및 단백의 발현정도를 관찰하였다. 비교적 상위 조절 인자로 생각되는 PKC, tyrosine kinase, PI3K 뿐만 아니라 MAPK(ERK, p38)의 관련여부를 알아보았다.
IL-1β와 MAPK의 관계에 대한 지금까지 연구결과를 보면 인간의 기도 평활근에서
IL-1β투여 후 MAPK인 ERK, p38, JNK의 인산화가 증가된다고 하였고,11) 그 외 인체의 여러 세포에서
IL-1β가 ERK, p38, JNK의 신호전달체계를 거쳐 세포 내에 작용한다고 하였다.12)13)14) 하지만 호흡기 상피세포에서 COX-2의 발현과정에 관여하는 여러 가지 신호전달물질에 대한 정확한 연구결과는 부족한 실정이며, 특히 PKC와 MAPK와의 상호 작용에 대한 연구는 부족한 실정이다.
본 연구에서 MAPK중에서 MEK/ERK 억제제인 PD98059를 전처치한 경우에서는 COX-2 유전자 및 단백의 발현이 억제되었으나. p38 억제제인 SB203580를 전처치한 경우에서는 COX-2 유전자 및 단백의 발현에 영향이 없음을 알 수 있었다. 이는 MAPK 중에서 ERK는 COX-2의 발현에 관여하나 p38은 관여하지 않음을 나타낸다. 하지만 Newton 등15)은 A549 세포주를 이용한 실험에서 ERK 억제제인 PD98059와 p38 억제제인 SB203580이
PGE2의 분비는 억제하지만
IL-1β에 의한 COX-2의 발현에는 영향을 미치지 않았다고 하여 IL-1β에 의한 COX-2 산물인
PGE2의 분비조절은 COX-2가 직접 관여한다기 보다는 COX-2의 윗단계(upstream)에서 조절된다고 하였다. 이에 반해 본 연구에서는 MAPK 중 ERK 억제제만이
IL-1β에 의한 COX-2 유전자 및 단백의 발현을 억제하여, ERK가 IL-1β에 의한 COX-2 발현에 관여하는 것을 알 수 있었다.
Lin 등7)은 A549 세포주를 사용한 실험에서 PKC 억제제인 Go6976(3~20 μM)과
Ro31-8220(3~20 μM)을 사용한 경우 IL-1β에 의한 COX-2 단백의 발현이 억제된다고 하였다. NCI-H292 세포주에서
TNF-α가 COX-2 단백의 발현을 촉진한다고 보고한 Chen 등1)은 PKC 억제제인 staurosporine(30 or 100 nM)을 사용한 경우에서
TNF-α에 의한 COX-2 단백의 발현이 억제되었다고 하였다. 이번 실험에서는 PKC 억제제인 Ro31-8220을 전처치하고
IL-1β를 처리하였을 경우, IL-1β에 의한 COX-2 유전자 및 단백의 발현이 억제되었다. 이는 COX-2의 발현에 PKC가 신호전달체계로 관여하고 있음을 나타낸다. 또한 이때 ERK의 인산화가 억제된 것으로 보아 PKC가 ERK보다 상위 단계에서 COX-2의 발현에 관여한다는 사실도 알 수 있었다. 한편 Ro31-8220은 PKC를 억제하는 효과 이외에도 mitogen- and stress-activated protein kinase-1(MSK1)를 비롯한 다양한 protein kinase를 억제한다고 알려져 있으므로,16) Ro31-8220에 의한 COX-2 억제작용이 반드시 PKC를 억제하는 것에만 의하지 않고 다른 protein kinase를 억제함으로써 나타날 가능성도 배제할 수 없을 것이다.
본 실험에서 tyrosine kinase 억제제인 genistein은 COX-2 유전자 및 단백의 발현에 영향을 미치지 않았다. 그러나 이러한 결과는 A549 세포주에서 tyrosine kinase 억제제인 genistein과 tyrphostin AG126을 사용한 경우
IL-1β에 의한 COX-2 단백의 발현이 억제된다.7)11)17)는 것과는 상반되는 양상이었다. 이러한 상반되는 결과는 아마도 세포주의 차이이거나 처리한 억제제의 농도차이나 혹은 자극제로 사용된 사이토카인의 차이일 가능성이 있다.
대부분 PKC보다는 상위에 존재하여 세포의 성장과 분화에 관여하는 것으로 잘 알려져 있는18)19) PI3K의 억제제인 LY294002를 전처치한 경우에서도
IL-1β에 의한 COX-2 유전자 및 단백의 발현에 영향을 미치지 않았다.
이상의 결과로 볼 때 배양 호흡기 상피세포인 NCI-H292 세포에서
IL-1β에 의한 COX-2 유전자와 단백의 발현에는 PKC와 ERK가 신호전달체계에 관여하며, PKC가 ERK의 상위 단계에서 조절에 관여한다. 그러나
IL-1β에 의한 COX-2의 발현과정에서 신호전달체계에 관여하는 단백들의 특이적 억제제를 사용했을 때 COX-2 유전자 및 단백의 발현이 완전하게 억제되지는 못하였다. Phosphatidylcho-line-specific phospholipase C(PC-PLC)의 경우, Lin 등7)은 A549 세포주를 사용한 실험에서 PC-PLC 억제제인 D609를 사용한 경우
IL-1β에 의한 COX-2 단백의 발현이 억제된다고 하였으나, NCI-H292 세포주에서
TNF-α에 의한 COX-2 단백의 발현과정에 대한 연구에서는 D609에 의해 COX-2 단백의 발현이 억제되지 않았다.1) 또 Pype 등20)은 인간 호흡기 평활근세포에서
IL-1β의 COX-2 유도작용에 p38과 nuclear factor(NF)-kB의 활성이 필요하다고 하였다. 그러므로 앞에서 언급된 신호전달체계 이외에 PL-PLC,
NF-κB 등과 같은 다른 신호전달물질도
IL-1β에 의한 COX-2 발현에 관여할 가능성이 많으므로 이에 대한 추가적인 연구도 필요할 것이다.
IL-1β에 의한 COX-2 유전자와 단백의 합성에는 여러 단계의 조절 단백이 참여하고 있으며 이러한 단백들은 특이적 억제제에 의해서 어느 정도 조절될 수 있으므로 이를 기반으로 사람의 호흡기 염증을 치유하는 연구가 이루어져야 할 것으로 생각된다.
결 론
사람의 호흡기 상피세포인 NCI-H292 세포에서 IL-1β에 의한 COX-2 유전자와 단백의 발현은 PKC-MEK/ERK 신호전달체계에 의해 조절됨을 알 수 있었다.
REFERENCES
-
Chen CC, Sun YT, Chen JJ, Chiu KT.
TNF-α-induced cyclooxygenase-2 expression in human lung epithelial cells: involvement of the phospho-lipase
C-γ2, protein kinase
C-α, tyrosine kinase,
NF-κB-inducing kinase, and
I-κB kinase 1/2 pathway. J Immunol 2000;165:2719-28.
-
Mitchell JA, Akarasereenont P, Thiemermann T, Flower RJ, Vane JR.
Selectivity of nonsteroid antiinflammatory drugs as inhibitors of constitutive and inducible cyclooxygenase. Proc Natl Acad Sci USA 1993;90:11693-7.
-
Maier JA, Hla T, Maciag T.
Cyclooxygenase is an immediate early gene induced by interleukin-1 in human endothelial cells. J Biol Chem 1990;265:10805-8.
-
Lee SH, Soyoola E, Chanmugam P, Hart S, Sun W, Zhong H, et al.
Selective expression of mitogen-inducible cyclooxygenase in macrophages stimulated with lipopolysaccharide. J Biol Chem 1992;267:25934-8.
-
Vane JR, Bakhle YS, Botting RM.
Cyclooxygenase 1 and 2. Annu Rev Pharmacol Toxicol 1998;38:97-120.
-
Kim YD, Song SY, Kwon EJ, Baek SH, Cho GS, Kim HS, et al.
IL-1β-mediated COX-2 expression in human airway epithelial cells. Korean J Otolaryngol 2002;45:132-6.
-
Lin CH, Sheu SY, Lee HM, Ho YS, Lee WS, Ko WC, et al.
Involvement of protein C-γ in
IL-1β-induced cyclooxygenase-2 expression in human pulmonary epithelial cells. Mol Pharmacol 2000;57:36-43.
-
Kim YD, Kwon EJ, Kwon TK, Baek SH, Song SY, Suh JS. Regulation of
IL-1β-mediated MUC2 gene in NCI-H292 human airway epithelial cells. Biochem Biophys Res Commun 2000;274:112-6.
-
Watkins DN, Peroni DJ, Lenzo JC, Knight DA, Garlepp MJ, Thompson PJ.
Expression and localization of COX-2 in human airways and cultured airway epithelial cells. Eur Respir J 1999;13:999-1007.
-
Mitchell JA, Belvisi MG, Akarasereenont P, Robbins RA, Kwon OJ, Croxtall J, et al. Induction of cyclooxygenase-2 by cytokines in human pulmonary epithelial cells: regulation by dexamethasone. Br J Pharmacol 1994;113:1008-14.
-
Hallsworth MP, Moir LM, Lai D, Hirst SJ.
Inhibitors of mitogen-activated protein kinases differentially regulate eosinophil-activating cytokine release from human airway smooth muscle. Am J Respir Crit Care 2001;164:668-97.
-
Geng Y, Valbracht J, Lotz M. Selective activation of the mitogen-activated protein kinase subgroups c-Jun NH2 terminal kinase and p38 by IL-1 and TNF in human articular chondrocytes. J Clin Invest 1996;96:2425-30.
-
Gupta S, Barrett T, Whitmarsh AJ, Cavanagh H, Sluss HK, Derijard B, et al. Selective interaction of JNK protein kinase isoforms with transcription factors. EMBO J 1996;15:2760-70.
-
Wilmer WA, Tan LC, Dickerson JA, Danne M, Rovin BH.
Interleukin-1b induction of mitogen-activated protein kinases in human masangial cells: role of oxidation. J Biol Chem 1997;272:10877-81.
-
Newton R, Cambridge L, Hart LA, Stevens DA, Lindsay MA, Barnes PJ.
The MAP kinase inhibitor, PD098059, UO126 and SB203580, inhibit IL-1 beta-dependent PGE (2) release via mechanistically distinct processes. Br J Pharmacol 2000;130:1353-61.
-
Deak M, Clifton AD, Lucocq LM, Alessi DR.
Mitogen- and stress-activated protein kinase-1 (MSK1) is directly activated by MAPK and SAPK2/p38, and may mediate activation of CREB. EMBO J 1998;17:4426-41.
-
Akarasereenont P, Thiemermann C. The induction of cyclooxygenase-2 in human pulmonary epithelial cells culture (A549) activated by
IL-1β is inhibited by tyrosine kinase inhibitors. Biochem Biophy Res Commun 1996;220:181-5.
-
Fry MJ.
Structure, regulation and function of phosphoinositide 3-kinase. Biochem Biophys Acta 1994;1226:237-68.
-
Kennedy SG, Wagner AJ, Conzen SD, Jordan J, Bellacosa A, Tsichlis PN, et al. The PI 3-kinase/Akt signaling pathway delivers an anti-apoptotic signal. Genes Dev 1997;11:701-13.
-
Pype JL, Xu H, Schuermans M, Dupont LJ, Wuyts W, Mak JC, et al.
Mechanisms of interleukin 1beta-induced human airway smooth muscle hyporesponsiveness to histamine. Involvement of p38 MAPK NF-kappaB. Am J Respir Crit Care Med 2001;163:1010-7.
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